为 CRISPR-Cas9 基因组编辑设计最优的向导 RNA (gRNA) 序列。支持在靶效率评分和脱靶预测。
| 参数 | 类型 | 是否必需 | 说明 |
|---|---|---|---|
gene_symbol |
string | 是 | HGNC 基因符号(例如 TP53、BRCA1) |
target_exon |
int | 否 | 指定外显子编号(默认:所有编码外显子) |
genome_build |
string | 否 | 参考基因组:hg38(默认)、hg19、mm10 |
pam_sequence |
string | 否 | PAM 模体:NGG(默认)、NAG、NGCG |
guide_length |
int | 否 | gRNA 长度(bp)(默认:20) |
gc_content_min |
float | 否 | 最低 GC%(默认:30) |
gc_content_max |
float | 否 | 最高 GC%(默认:70) |
poly_t_threshold |
int | 否 | 最大连续 T 数(默认:4) |
off_target_check |
bool | 否 | 启用脱靶预测(默认:true) |
max_mismatches |
int | 否 | 脱靶预测的最大错配数(默认:3) |
{
"gene": "TP53",
"genome": "hg38",
"guides": [
{
"id": "TP53_E2_G1",
"exon": 2,
"sequence": "GAGCGCTGCTCAGATAGCGATGG",
"pam": "NGG",
"position": "chr17:7669609-7669631",
"strand": "+",
"gc_content": 52.2,
"efficiency_score": 0.78,
"off_target_count": 2,
"off_targets": [...],
"warnings": []
}
]
}
综合多个位置特异性特征:
score = w1*position_score + w2*gc_score + w3*secondary_score + w4*poly_t_score
max_mismatches 个错配python scripts/main.py --gene TP53 --exon 4 --output results.json
python scripts/main.py --gene BRCA1 --max-mismatches 2 --gc-min 35 --gc-max 65
python scripts/main.py --gene-list genes.txt --genome mm10 --pam NAG
⚠️ 难度:高 - 实验使用前需要人工验证
参见 references/ 目录:
scoring_algorithms.pdf - 深度学习模型(DeepCRISPR、CRISPRon)off_target_databases/ - GUIDE-seq 验证数据集efficiency_benchmarks/ - Doench 等人 2014/2016 规则核心脚本:scripts/main.py
关键函数:
fetch_gene_sequence() - 从 Ensembl 获取外显子序列find_pam_sites() - 识别 PAM 邻接靶点score_efficiency() - 计算在靶评分predict_off_targets() - 使用 Bowtie2/BWA 比对进行脱靶预测rank_guides() - 多标准优化排序可选:
| 风险指标 | 评估 | 等级 |
|---|---|---|
| 代码执行 | 使用生物信息学工具的 Python 脚本 | 高 |
| 网络访问 | 调用 Ensembl API 获取基因序列 | 高 |
| 文件系统访问 | 读写基因组数据和结果 | 中 |
| 指令篡改 | 科学计算准则 | 低 |
| 数据暴露 | 基因组数据安全处理 | 中 |
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# Python 依赖
pip install -r requirements.txt
# 可选工具
# bowtie2(用于本地脱靶比对)
# ViennaRNA(用于二级结构预测)
这个 Skill 的文档和参考资料写得很专业,但实际代码只能生成模拟数据,不能真正设计 CRISPR gRNA。安全提示做得不错,明确告知这是演示用途,输出结果仅供演示参考,不适合用于真实实验决策。如果你需要真正可用的 gRNA 设计工具,建议选择经过实验验证的在线工具如 CHOPCHOP 或 CRISPOR。代码质量尚可,但依赖项版本未固定,使用前需谨慎审计。